banner
Центр новостей
Продуктивное сотрудничество приведет к желаемому результату.

Интерферон

Aug 06, 2023

Клеточная смерть и болезни, том 14, Номер статьи: 319 (2023) Цитировать эту статью

320 Доступов

1 Альтметрика

Подробности о метриках

Установлена ​​сильная корреляция между экспрессией опухолей NOS2 и COX2 и плохими клиническими исходами при раке молочной железы ER. Однако механизмы опухолевой индукции этих ферментов неясны. Анализ Атласа генома рака (TCGA) выявил корреляцию между экспрессией NOS2 и COX2 и цитокинами Th1. Здесь анализ одноклеточных RNAseq клеток TNBC показывает мощную индукцию NOS2 и COX2 под действием IFNγ в сочетании с IL1β или TNFα. Учитывая, что IFNγ секретируется цитолитическими лимфоцитами, которые улучшают клинические результаты, эта роль IFNγ представляет собой двойственность. Чтобы разобраться в этой загадке, опухолевые Т-клетки NOS2, COX2 и CD8+ были пространственно проанализированы в агрессивных ER-, TNBC и HER2+ опухолях молочной железы. Высокая экспрессия и кластеризация опухолевых клеток, экспрессирующих NOS2, наблюдались на границе раздела опухоль/строма в присутствии CD8+ Т-клеток, ограниченных стромой. Высокая экспрессия и кластеризация COX2-экспрессирующих опухолевых клеток распространялись на области иммунной пустыни в ядре опухоли, где проникновение CD8+ Т-клеток было ограничено или отсутствовало. Более того, опухолевые клетки с высокой экспрессией NOS2 располагались проксимальнее областей с повышенным сателлитозом, что указывает на кластеры клеток с более высоким метастатическим потенциалом. Дальнейшие эксперименты in vitro показали, что IFNγ + IL1β/TNFα увеличивает удлинение и миграцию обработанных опухолевых клеток. Этот пространственный анализ микроокружения опухоли дает важное представление об отдельных участках, где ограниченные стромой CD8+ Т-клетки существуют проксимальнее опухолевых ниш, экспрессирующих NOS2, которые могут иметь повышенный метастатический потенциал.

Альфа-негативный (ER-) и трижды негативный рак молочной железы с рецептором эстрогена (TNBC) составляют меньшую долю типов рака молочной железы, но являются одними из наиболее агрессивных злокачественных новообразований с ограниченными стратегиями лечения по сравнению с менее агрессивными ER + опухолями [1]. За последнее десятилетие значительная часть раковых заболеваний продемонстрировала повышенную экспрессию NOS2 [2], при этом раковые заболевания, от меланомы до глиомы, сверхэкспрессируют NOS2 [3,4,5,6]. При раке молочной железы повышение NOS2 зарегистрировано у >70% пациентов [7]. Интересно, что повышенная экспрессия NOS2 в опухоли коррелирует с мутацией P53 и предсказывает плохую выживаемость у пациентов с раком молочной железы ER- (отношение рисков = 6), но не у пациентов с раком молочной железы ER + [7, 8]. В то время как повышенная экспрессия опухолевого COX2 также была предиктором плохого исхода, что определялось HR 2,45 у пациентов ER из той же когорты [9], повышенная коэкспрессия NOS2/COX2 была в значительной степени предиктором плохого результата (HR 21) [10]. Эти результаты позволяют предположить, что повышенная коэкспрессия NOS2/COX2 в опухоли способствует прогрессированию агрессивных фенотипов рака молочной железы [10, 11]; однако механизмы индукции NOS2/COX2 в опухолях остаются неясными.

Изучение Атласа генома рака (TCGA) выявило корреляцию между экспрессией опухолевого NOS2/COX2 и интерфероном-гамма (IFNγ), интерлейкином-17 (IL17), IL1 и toll-подобным рецептором-4 (TLR4), которые часто связаны с с противораковым эффектом [12]. Интересно, что эти ассоциации противоречивы, поскольку повышенная экспрессия опухолевого NOS2/COX2 предсказывает плохие клинические результаты [7, 9, 10]. Недавно повышенная экспрессия NOS2 и COX2 была обнаружена в различных иммунных и опухолевых клетках при лечении IFNγ и цитокинами или агонистами TLR4, что согласуется с прямой передачей сигналов NOS2/COX2, как сообщалось ранее [10, 13]. Эти результаты предполагают ортогональную связь между экспрессией NOS2/COX2 в опухоли, что может способствовать созданию различного микроокружения опухоли, что способствует плохим клиническим результатам [13].

Чтобы изучить эти возможности, мы показываем, что цитокины Th1 эффективно стимулируют экспрессию NOS2 и COX2 в опухолевых клетках in vitro. Анализ одноклеточной РНКсек (scRNAseq) показал, что IFNγ в сочетании с интерлейкином 1β (IL1β) или фактором некроза опухоли-альфа (TNFα) индуцирует более высокую экспрессию NOS2/COX2, чем цитокины в качестве отдельных агентов. Кроме того, цитокины, активация которых повышалась в ER-опухолях молочной железы с высокой экспрессией NOS2 [7, 10], включая IL6 и IL8, индуцировались этим лечением и коррелировали с экспрессией NOS2/COX2. Кроме того, это исследование выявило уникальную синергию между IL1α/β, которая усиливает экспрессию NOS2 и COX2. Мультиплексная пространственная визуализация выявила скопления клеток с высоким уровнем экспрессии NOS2, проксимальных к областям CD8+ Т-клеток, ограниченных стромой, которые, как известно, продуцируют IFNγ, и предполагают небольшую воспалительную нишу на границе опухоль/строма в этих опухолях. Хотя ЦОГ2 присутствовал в этих регионах, он был более высоко экспрессирован дальше в опухоль, в иммунных пустынных областях с низким проникновением CD8+ Т-клеток. Сравнение различных участков внутри одной и той же опухоли или географических регионов между опухолями позволяет предположить пространственное и временное прогрессирование воспалительных участков в областях с ограниченным количеством лимфоидных клеток, которое прогрессирует до иммунной пустыни в областях с высокой экспрессией ЦОГ2. Эти новые наблюдения предоставляют четкие пространственные отпечатки агрессивных фенотипов опухолей, которые коррелируют со снижением выживаемости при специфическом раке молочной железы [7, 10].

30–50%, >50–80%, and >80% positive cells [7]. For COX2 staining, scores of negative to weak [1, 2] or moderate to strong [3, 4] were categorized as low or high, respectively [9]. Herein, NOS2 and COX2 expressions were also analyzed by fluorescent staining performed on the Leica Biosystems (Wetzlar, Germany) Bond RX Autostainer XL ST5010 using the Bond Polymer Refine Kit (Leica Biosystems DS9800), with the omission of the Post Primary Block reagent, DAB and Hematoxylin. After antigen retrieval with EDTA (Bond Epitope Retrieval 2), sections were incubated for 30 min with COX2 (Cell Signaling Technology, Danvers, MA, no. 12282, 1:100), followed by the Polymer reagent and OPAL Fluorophore 520 (AKOYA, Marlborough, MA). The COX2 antibody complex was stripped by heating with Bond Epitope Retrieval 2. Sections were then incubated for 30 min with NOS2 antibody (Abcam no. ab15323, 1:50), followed by the Polymer reagent and OPAL Fluorophore 690. The NOS2 antibody complex was stripped by heating with Bond Epitope Retrieval 2 and then stained with CD8 (Abcam no. 101500, 1:100) or IFNγ (Abcam no. 231036, 1:200), followed by the Polymer reagent and OPAL Fluorophore 570. Sections were stained with DAPI and coverslipped with Prolong Gold Anti-Fade Reagent (Invitrogen). Images were captured using the Aperio ScanScope FL whole slide scanner (Leica). The original IHC previously reported [7, 9] and fluorescent NOS2/COX2 staining results were generally consistent./p>